Manipulation et analyse de données avec dplyr
Last updated on 2025-05-05 | Edit this page
Overview
Questions
- Analyse de données en R à l’aide du méta-package (paquet) tidyverse
Objectives
- Décrire l’objectif des packages
dplyr
ettidyr
. - Décrire plusieurs fonctions extrêmement utiles pour manipuler des données.
- Décrire le concept d’un tableau large et long, et comment remodeler un tableau d’un format à l’autre.
- Montrer comment joindre des tables.
Cet épisode est basé sur la leçon Data Analysis and Visualisation in R for Ecologists de Data Carpentries.
Manipulation des données avec dplyr
et
tidyr
Extraire un sous-ensemble avec les crochets est pratique, mais peut être fastidieux et difficile à lire, en particulier pour les opérations compliquées.
Certains packages peuvent grandement faciliter notre tâche lorsque
nous manipulons des données. Les packages dans R sont essentiellement
des ensembles de fonctions supplémentaires qui vous permettent de faire
plus de choses. Les fonctions que nous avons utilisées jusqu’à présent,
comme str()
ou data.frame()
, sont intégrées à
R ; le chargement de packages donne accès à d’autres fonctions
spécifiques. Avant d’utiliser un package pour la première fois, vous
devez l’installer sur votre machine, puis vous devez l’importer à chaque
session R suivante lorsque vous en avez besoin.
Le package
dplyr
fournit des outils puissants pour les tâches de manipulation de données. Il est conçu pour fonctionner directement avec des data frames, avec de nombreuses tâches de manipulation optimisées.Comme nous le verrons plus loin, nous souhaitons parfois qu’un data frame soit remodelé pour pouvoir effectuer des analyses spécifiques ou pour la visualisation. Le package
tidyr
résout ce problème courant de remodelage des données et fournit des outils pour une manipulation tidy des données, c’est-à-dire selon les principes du tidyverse.
Pour en savoir plus sur dplyr
et
tidyr
, vous voudrez consulter l’
aide-mémoire sur la transformation de données pratique avec ** et celui
sur .
- Le package
tidyverse
est un “package parapluie” qui installe plusieurs packages utiles pour l’analyse des données qui fonctionnent bien ensemble, tels quetidyr
, * *dplyr
**,ggplot2
,tibble
, etc. Ces packages nous aident à travailler et à interagir avec les données. Ils nous permettent de faire beaucoup de choses avec nos données, comme en extraire des sous-ensembles, les transformer, les visualiser, etc.
Si vous avez configuré RStudio, vous devriez déjà avoir installé le package tidyverse. Vérifiez si vous l’avez en essayant de le charger depuis la librarie (library) :
R
## load the tidyverse packages, incl. dplyr
library("tidyverse")
Si vous recevez un message d’erreur
aucun package nommé 'tidyverse' n'est trouvé
alors vous
n’avez pas installé le package pour cette version de R. Pour installer
le package tidyverse
, tapez :
R
BiocManager::install("tidyverse")
Si vous avez dû installer le package
tidyverse
, n’oubliez pas de le charger
dans cette session R en utilisant la commande library()
ci-dessus !
Chargement de données avec le tidyverse
Au lieu d’utiliser la fonction read.csv()
, nous allons
lire nos données avec la fonction read_csv()
(notez le
_
au lieu du .
) du package
readr
du tidyverse.
R
rna <- read_csv("data/rnaseq.csv")
## view the data
rna
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 19
gene sample expression organism age sex infection strain time tissue
<chr> <chr> <dbl> <chr> <dbl> <chr> <chr> <chr> <dbl> <chr>
1 Asl GSM254… 1170 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
2 Apod GSM254… 36194 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
3 Cyp2d22 GSM254… 4060 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
4 Klk6 GSM254… 287 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
5 Fcrls GSM254… 85 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
6 Slc2a4 GSM254… 782 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
7 Exd2 GSM254… 1619 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
8 Gjc2 GSM254… 288 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
9 Plp1 GSM254… 43217 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
10 Gnb4 GSM254… 1071 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
# ℹ 32,418 more rows
# ℹ 9 more variables: mouse <dbl>, ENTREZID <dbl>, product <chr>,
# ensembl_gene_id <chr>, external_synonym <chr>, chromosome_name <chr>,
# gene_biotype <chr>, phenotype_description <chr>,
# hsapiens_homolog_associated_gene_name <chr>
Notez que la classe de la variable est désormais appelée “tibble”.
Les tibbles modifient certains comportements des objets data frame que nous avons introduits précédemment. La structure des données est très similaire à un data frame. Pour nos besoins, les seules différences sont les suivantes :
Il affiche le type de données de chaque colonne sous son nom. Notez que <
dbl
> est un type de données défini pour contenir des valeurs numériques décimales.Il imprime uniquement les premières lignes de données et seulement les colonnes affichables à l’écran.
Nous allons maintenant apprendre les fonctions
dplyr
les plus courantes :
-
select()
: extraire des sous-ensembles de colonnes -
filter()
: extraire des sous-ensembles de lignes -
mutate()
: crée de nouvelles colonnes en utilisant les informations de colonnes préexistantes -
group_by()
etsummarise()
: créent des statistiques récapitulatives sur des données groupées -
arrange()
: trier les résultats -
count()
: compte des valeurs discrètes
Sélection de colonnes et filtrage de lignes
Pour sélectionner les colonnes d’un bloc de données, utilisez
select()
. Le premier argument de cette fonction est le
dataframe (rna
), et les arguments suivants reprennent les
colonnes à conserver.
R
select(rna, gene, sample, tissue, expression)
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 4
gene sample tissue expression
<chr> <chr> <chr> <dbl>
1 Asl GSM2545336 Cerebellum 1170
2 Apod GSM2545336 Cerebellum 36194
3 Cyp2d22 GSM2545336 Cerebellum 4060
4 Klk6 GSM2545336 Cerebellum 287
5 Fcrls GSM2545336 Cerebellum 85
6 Slc2a4 GSM2545336 Cerebellum 782
7 Exd2 GSM2545336 Cerebellum 1619
8 Gjc2 GSM2545336 Cerebellum 288
9 Plp1 GSM2545336 Cerebellum 43217
10 Gnb4 GSM2545336 Cerebellum 1071
# ℹ 32,418 more rows
Pour sélectionner toutes les colonnes sauf certaines, mettez un “-” devant la variable à exclure.
R
select(rna, -tissue, -organism)
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 17
gene sample expression age sex infection strain time mouse ENTREZID
<chr> <chr> <dbl> <dbl> <chr> <chr> <chr> <dbl> <dbl> <dbl>
1 Asl GSM2545… 1170 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 109900
2 Apod GSM2545… 36194 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 11815
3 Cyp2d22 GSM2545… 4060 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 56448
4 Klk6 GSM2545… 287 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 19144
5 Fcrls GSM2545… 85 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 80891
6 Slc2a4 GSM2545… 782 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 20528
7 Exd2 GSM2545… 1619 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 97827
8 Gjc2 GSM2545… 288 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 118454
9 Plp1 GSM2545… 43217 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 18823
10 Gnb4 GSM2545… 1071 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 14 14696
# ℹ 32,418 more rows
# ℹ 7 more variables: product <chr>, ensembl_gene_id <chr>,
# external_synonym <chr>, chromosome_name <chr>, gene_biotype <chr>,
# phenotype_description <chr>, hsapiens_homolog_associated_gene_name <chr>
Cela sélectionnera toutes les variables de rna
sauf
tissue
et organism
.
Pour choisir des lignes en fonction d’un critère spécifique, utilisez
filter()
:
R
filter(rna, sex == "Male")
OUTPUT
# A tibble: 14,740 × 19
gene sample expression organism age sex infection strain time tissue
<chr> <chr> <dbl> <chr> <dbl> <chr> <chr> <chr> <dbl> <chr>
1 Asl GSM254… 626 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
2 Apod GSM254… 13021 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
3 Cyp2d22 GSM254… 2171 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
4 Klk6 GSM254… 448 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
5 Fcrls GSM254… 180 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
6 Slc2a4 GSM254… 313 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
7 Exd2 GSM254… 2366 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
8 Gjc2 GSM254… 310 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
9 Plp1 GSM254… 53126 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
10 Gnb4 GSM254… 1355 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
# ℹ 14,730 more rows
# ℹ 9 more variables: mouse <dbl>, ENTREZID <dbl>, product <chr>,
# ensembl_gene_id <chr>, external_synonym <chr>, chromosome_name <chr>,
# gene_biotype <chr>, phenotype_description <chr>,
# hsapiens_homolog_associated_gene_name <chr>
R
filter(rna, sex == "Male" & infection == "NonInfected")
OUTPUT
# A tibble: 4,422 × 19
gene sample expression organism age sex infection strain time tissue
<chr> <chr> <dbl> <chr> <dbl> <chr> <chr> <chr> <dbl> <chr>
1 Asl GSM254… 535 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
2 Apod GSM254… 13668 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
3 Cyp2d22 GSM254… 2008 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
4 Klk6 GSM254… 1101 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
5 Fcrls GSM254… 375 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
6 Slc2a4 GSM254… 249 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
7 Exd2 GSM254… 3126 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
8 Gjc2 GSM254… 791 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
9 Plp1 GSM254… 98658 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
10 Gnb4 GSM254… 2437 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
# ℹ 4,412 more rows
# ℹ 9 more variables: mouse <dbl>, ENTREZID <dbl>, product <chr>,
# ensembl_gene_id <chr>, external_synonym <chr>, chromosome_name <chr>,
# gene_biotype <chr>, phenotype_description <chr>,
# hsapiens_homolog_associated_gene_name <chr>
Imaginons maintenant que nous nous intéressions aux homologues
humains des gènes de souris analysés dans ces données. Ces informations
se trouvent dans la dernière colonne du tibble rna
, nommée
hsapiens_homolog_associated_gene_name
. Pour le visualiser
facilement, nous allons créer un nouveau tableau contenant uniquement
les 2 colonnes gene
et
hsapiens_homolog_associated_gene_name
.
R
genes <- select(rna, gene, hsapiens_homolog_associated_gene_name)
genes
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 2
gene hsapiens_homolog_associated_gene_name
<chr> <chr>
1 Asl ASL
2 Apod APOD
3 Cyp2d22 CYP2D6
4 Klk6 KLK6
5 Fcrls FCRL2
6 Slc2a4 SLC2A4
7 Exd2 EXD2
8 Gjc2 GJC2
9 Plp1 PLP1
10 Gnb4 GNB4
# ℹ 32,418 more rows
Certains gènes de souris n’ont pas d’homologues humains. Ceux-ci
peuvent être récupérés en utilisant filter()
et la fonction
is.na()
, qui détermine si quelque chose est un
NA
.
R
filter(genes, is.na(hsapiens_homolog_associated_gene_name))
OUTPUT
# A tibble: 4,290 × 2
gene hsapiens_homolog_associated_gene_name
<chr> <chr>
1 Prodh <NA>
2 Tssk5 <NA>
3 Vmn2r1 <NA>
4 Gm10654 <NA>
5 Hexa <NA>
6 Sult1a1 <NA>
7 Gm6277 <NA>
8 Tmem198b <NA>
9 Adam1a <NA>
10 Ebp <NA>
# ℹ 4,280 more rows
Si on veut conserver uniquement les gènes de souris qui ont un
homologue humain, on peut utiliser “!” qui inverse le résultat logique
pour demander chaque ligne où
hsapiens\_homolog\_associated\_gene\_name
n’est
pas un NA
.
R
filter(genes, !is.na(hsapiens_homolog_associated_gene_name))
OUTPUT
# A tibble: 28,138 × 2
gene hsapiens_homolog_associated_gene_name
<chr> <chr>
1 Asl ASL
2 Apod APOD
3 Cyp2d22 CYP2D6
4 Klk6 KLK6
5 Fcrls FCRL2
6 Slc2a4 SLC2A4
7 Exd2 EXD2
8 Gjc2 GJC2
9 Plp1 PLP1
10 Gnb4 GNB4
# ℹ 28,128 more rows
Pipes
Comment faire si vous souhaitez sélectionner et filtrer en même temps ? Il existe trois façons de procéder : utiliser des étapes intermédiaires, des fonctions imbriquées ou des pipes.
Avec des étapes intermédiaires, vous créez un data frame temporaire et l’utilisez comme entrée de la fonction suivante, comme ceci :
R
rna2 <- filter(rna, sex == "Male")
rna3 <- select(rna2, gene, sample, tissue, expression)
rna3
OUTPUT
# A tibble: 14,740 × 4
gene sample tissue expression
<chr> <chr> <chr> <dbl>
1 Asl GSM2545340 Cerebellum 626
2 Apod GSM2545340 Cerebellum 13021
3 Cyp2d22 GSM2545340 Cerebellum 2171
4 Klk6 GSM2545340 Cerebellum 448
5 Fcrls GSM2545340 Cerebellum 180
6 Slc2a4 GSM2545340 Cerebellum 313
7 Exd2 GSM2545340 Cerebellum 2366
8 Gjc2 GSM2545340 Cerebellum 310
9 Plp1 GSM2545340 Cerebellum 53126
10 Gnb4 GSM2545340 Cerebellum 1355
# ℹ 14,730 more rows
Ceci est lisible, mais peut encombrer votre espace de travail avec de nombreux objets intermédiaires que vous devez nommer individuellement. Avec beaucoup d’étapes, cette approche devient difficile à suivre.
Vous pouvez également imbriquer des fonctions (c’est-à-dire une fonction dans une autre), comme ceci :
R
rna3 <- select(filter(rna, sex == "Male"), gene, sample, tissue, expression)
rna3
OUTPUT
# A tibble: 14,740 × 4
gene sample tissue expression
<chr> <chr> <chr> <dbl>
1 Asl GSM2545340 Cerebellum 626
2 Apod GSM2545340 Cerebellum 13021
3 Cyp2d22 GSM2545340 Cerebellum 2171
4 Klk6 GSM2545340 Cerebellum 448
5 Fcrls GSM2545340 Cerebellum 180
6 Slc2a4 GSM2545340 Cerebellum 313
7 Exd2 GSM2545340 Cerebellum 2366
8 Gjc2 GSM2545340 Cerebellum 310
9 Plp1 GSM2545340 Cerebellum 53126
10 Gnb4 GSM2545340 Cerebellum 1355
# ℹ 14,730 more rows
Cette approche est pratique, mais peut être difficile à lire si trop de fonctions sont imbriquées, car R évalue l’expression de l’intérieur vers l’extérieur (dans ce cas, filtrer, puis sélectionner).
La dernière option, le pipe, est un ajout plus récent à R. Un pipe permet de prendre la sortie d’une fonction et de la passer directement à la suivante. Cette approche est utile lorsque vous devez faire beaucoup d’opérations sur le même jeu de données.
Les pipes dans R s’écrivent à %>%
(mis à
disposition via le package magrittr
) ou |>
(via R). Si vous utilisez RStudio, vous pouvez afficher un pipe
avec Ctrl + Shift + M sur un PC ou
Cmd + Shift + M sur un Mac.
Dans le code ci-dessus, nous utilisons le pipe pour passer
les données rna
d’abord dans filter()
pour
conserver les lignes où sex
est égal à "Male"
,
puis dans select()
pour conserver uniquement les colonnes
gene
, sample
, tissue
et
expression
.
Le pipe %>%
prend l’objet à sa gauche et le
passe directement en tant que premier argument à la fonction à sa
droite. Nous n’avons donc plus besoin d’inclure explicitement les
données comme un argument pour les fonctions filter()
et
select()
.
R
rna |>
filter(sex == "Male") |>
select(gene, sample, tissue, expression)
OUTPUT
# A tibble: 14,740 × 4
gene sample tissue expression
<chr> <chr> <chr> <dbl>
1 Asl GSM2545340 Cerebellum 626
2 Apod GSM2545340 Cerebellum 13021
3 Cyp2d22 GSM2545340 Cerebellum 2171
4 Klk6 GSM2545340 Cerebellum 448
5 Fcrls GSM2545340 Cerebellum 180
6 Slc2a4 GSM2545340 Cerebellum 313
7 Exd2 GSM2545340 Cerebellum 2366
8 Gjc2 GSM2545340 Cerebellum 310
9 Plp1 GSM2545340 Cerebellum 53126
10 Gnb4 GSM2545340 Cerebellum 1355
# ℹ 14,730 more rows
Certains trouveront peut-être utile de lire le pipe comme le
mot “ensuite”. Par exemple, dans l’exemple ci-dessus, nous avons pris le
data frame rna
, ensuite nous avons
filtré
pour les lignes avec sex == "Male"
,
ensuite nous avons sélectionné les colonnes gene
sample
, tissue
, et
expression
.
Les fonctions de dplyr
sont
relativement simples, mais en les combinant avec le pipe, nous
pouvons accomplir des manipulations plus complexes.
Si nous voulons créer un nouvel objet avec cette version plus petite des données, il suffit de lui attribuer un nouveau nom :
R
rna3 <- rna |>
filter(sex == "Male") |>
select(gene, sample, tissue, expression)
rna3
OUTPUT
# A tibble: 14,740 × 4
gene sample tissue expression
<chr> <chr> <chr> <dbl>
1 Asl GSM2545340 Cerebellum 626
2 Apod GSM2545340 Cerebellum 13021
3 Cyp2d22 GSM2545340 Cerebellum 2171
4 Klk6 GSM2545340 Cerebellum 448
5 Fcrls GSM2545340 Cerebellum 180
6 Slc2a4 GSM2545340 Cerebellum 313
7 Exd2 GSM2545340 Cerebellum 2366
8 Gjc2 GSM2545340 Cerebellum 310
9 Plp1 GSM2545340 Cerebellum 53126
10 Gnb4 GSM2545340 Cerebellum 1355
# ℹ 14,730 more rows
Défi:
À l’aide de pipes, extraire un sous-ensemble de
rna
pour ne conserver que les observations des souris
femelles au temps 0, où le gène a une expression supérieure à 50000, et
ne conservez que les colonnes gene
, sample
,
time
, expression
et age
.
R
rna |>
filter(expression > 50000,
sex == "Female",
time == 0 ) |>
select(gene, sample, time, expression, age)
OUTPUT
# A tibble: 9 × 5
gene sample time expression age
<chr> <chr> <dbl> <dbl> <dbl>
1 Plp1 GSM2545337 0 101241 8
2 Atp1b1 GSM2545337 0 53260 8
3 Plp1 GSM2545338 0 96534 8
4 Atp1b1 GSM2545338 0 50614 8
5 Plp1 GSM2545348 0 102790 8
6 Atp1b1 GSM2545348 0 59544 8
7 Plp1 GSM2545353 0 71237 8
8 Glul GSM2545353 0 52451 8
9 Atp1b1 GSM2545353 0 61451 8
Mutate
Vous souhaiterez fréquemment créer de nouvelles colonnes basées sur
les valeurs des colonnes existantes, par exemple pour effectuer des
conversions d’unités ou pour trouver le rapport des valeurs dans deux
colonnes . Pour cela, nous utiliserons la fonction
mutate()
.
Pour créer une nouvelle colonne de temps en heures :
R
rna |>
mutate(time_hours = time * 24) |>
select(time, time_hours)
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 2
time time_hours
<dbl> <dbl>
1 8 192
2 8 192
3 8 192
4 8 192
5 8 192
6 8 192
7 8 192
8 8 192
9 8 192
10 8 192
# ℹ 32,418 more rows
Vous pouvez également créer une deuxième nouvelle colonne basée sur
la première nouvelle colonne dans le même appel de
mutate()
:
R
rna |>
mutate(time_hours = time * 24,
time_mn = time_hours * 60) |>
select(time, time_hours, time_mn)
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 3
time time_hours time_mn
<dbl> <dbl> <dbl>
1 8 192 11520
2 8 192 11520
3 8 192 11520
4 8 192 11520
5 8 192 11520
6 8 192 11520
7 8 192 11520
8 8 192 11520
9 8 192 11520
10 8 192 11520
# ℹ 32,418 more rows
Défi
Créez un nouveau data frane à partir de rna
qui répond
aux critères suivants : contient uniquement les colonnes
gene
, chromosome_name
,
phenotype_description
, sample
et
expression
. Les valeurs d’expression doivent être
transformées en log. Ce data frame doit contenir uniquement des gènes
situés sur les chromosomes sexuels, ayant bien un
phenotype \_description
, et une expression en log
supérieure à 5.
Astuce : réfléchissez bien à la façon dont les commandes doivent être ordonnées !
R
rna |>
mutate(expression = log(expression)) |>
select(gene, chromosome_name, phenotype_description, sample, expression) |>
filter(chromosome_name == "X" | chromosome_name == "Y") |>
filter(!is.na(phenotype_description)) |>
filter(expression > 5)
OUTPUT
# A tibble: 649 × 5
gene chromosome_name phenotype_description sample expression
<chr> <chr> <chr> <chr> <dbl>
1 Plp1 X abnormal CNS glial cell morphology GSM25… 10.7
2 Slc7a3 X decreased body length GSM25… 5.46
3 Plxnb3 X abnormal coat appearance GSM25… 6.58
4 Rbm3 X abnormal liver morphology GSM25… 9.32
5 Cfp X abnormal cardiovascular system phys… GSM25… 6.18
6 Ebp X abnormal embryonic erythrocyte morp… GSM25… 6.68
7 Cd99l2 X abnormal cellular extravasation GSM25… 8.04
8 Piga X abnormal brain development GSM25… 6.06
9 Pim2 X decreased T cell proliferation GSM25… 7.11
10 Itm2a X no abnormal phenotype detected GSM25… 7.48
# ℹ 639 more rows
Analyse de données “split-apply-combine”
De nombreuses tâches d’analyse de données peuvent être abordées à
l’aide du paradigme split-apply-combine : divisez les données
en groupes, appliquez une analyse à chaque groupe, puis combinez les
résultats. dplyr
rend cela très facile
grâce à l’utilisation de la fonction group_by()
.
R
rna |>
group_by(gene)
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 19
# Groups: gene [1,474]
gene sample expression organism age sex infection strain time tissue
<chr> <chr> <dbl> <chr> <dbl> <chr> <chr> <chr> <dbl> <chr>
1 Asl GSM254… 1170 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
2 Apod GSM254… 36194 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
3 Cyp2d22 GSM254… 4060 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
4 Klk6 GSM254… 287 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
5 Fcrls GSM254… 85 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
6 Slc2a4 GSM254… 782 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
7 Exd2 GSM254… 1619 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
8 Gjc2 GSM254… 288 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
9 Plp1 GSM254… 43217 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
10 Gnb4 GSM254… 1071 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
# ℹ 32,418 more rows
# ℹ 9 more variables: mouse <dbl>, ENTREZID <dbl>, product <chr>,
# ensembl_gene_id <chr>, external_synonym <chr>, chromosome_name <chr>,
# gene_biotype <chr>, phenotype_description <chr>,
# hsapiens_homolog_associated_gene_name <chr>
La fonction group_by()
n’effectue aucun traitement de
données, elle regroupe simplement les données en sous-ensembles : dans
l’exemple ci-dessus, notre tibble
initial de 32428
observations est divisé en 1474 groupes selon la variable
gene
.
On pourrait de même décider de regrouper le tibble par échantillons :
R
rna |>
group_by(sample)
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 19
# Groups: sample [22]
gene sample expression organism age sex infection strain time tissue
<chr> <chr> <dbl> <chr> <dbl> <chr> <chr> <chr> <dbl> <chr>
1 Asl GSM254… 1170 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
2 Apod GSM254… 36194 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
3 Cyp2d22 GSM254… 4060 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
4 Klk6 GSM254… 287 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
5 Fcrls GSM254… 85 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
6 Slc2a4 GSM254… 782 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
7 Exd2 GSM254… 1619 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
8 Gjc2 GSM254… 288 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
9 Plp1 GSM254… 43217 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
10 Gnb4 GSM254… 1071 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
# ℹ 32,418 more rows
# ℹ 9 more variables: mouse <dbl>, ENTREZID <dbl>, product <chr>,
# ensembl_gene_id <chr>, external_synonym <chr>, chromosome_name <chr>,
# gene_biotype <chr>, phenotype_description <chr>,
# hsapiens_homolog_associated_gene_name <chr>
Ici, notre tibble
initial de 32428 observations est
divisé en 22 groupes selon la variable sample
.
Une fois les données regroupées, les opérations qui suivent sont appliquées sur chaque groupe indépendamment.
La fonction summarise()
group_by()
est souvent utilisé avec
summarise()
, qui réduit chaque groupe en un résumé d’une
seule ligne.
group_by()
prend comme arguments les noms de colonnes
qui contiennent les variables catégorielles pour
lesquelles vous souhaitez calculer les statistiques récapitulatives.
Donc, pour calculer l’expression moyenne par gène :
R
rna |>
group_by(gene) |>
summarise(mean_expression = mean(expression))
OUTPUT
# A tibble: 1,474 × 2
gene mean_expression
<chr> <dbl>
1 AI504432 1053.
2 AW046200 131.
3 AW551984 295.
4 Aamp 4751.
5 Abca12 4.55
6 Abcc8 2498.
7 Abhd14a 525.
8 Abi2 4909.
9 Abi3bp 1002.
10 Abl2 2124.
# ℹ 1,464 more rows
Nous pourrions également vouloir calculer les niveaux d’expression moyens de tous les gènes dans chaque échantillon :
R
rna |>
group_by(sample) |>
summarise(mean_expression = mean(expression))
OUTPUT
# A tibble: 22 × 2
sample mean_expression
<chr> <dbl>
1 GSM2545336 2062.
2 GSM2545337 1766.
3 GSM2545338 1668.
4 GSM2545339 1696.
5 GSM2545340 1682.
6 GSM2545341 1638.
7 GSM2545342 1594.
8 GSM2545343 2107.
9 GSM2545344 1712.
10 GSM2545345 1700.
# ℹ 12 more rows
On peut également regrouper les observations par plusieurs colonnes :
R
rna |>
group_by(gene, infection, time) |>
summarise(mean_expression = mean(expression))
OUTPUT
`summarise()` has grouped output by 'gene', 'infection'. You can override using
the `.groups` argument.
OUTPUT
# A tibble: 4,422 × 4
# Groups: gene, infection [2,948]
gene infection time mean_expression
<chr> <chr> <dbl> <dbl>
1 AI504432 InfluenzaA 4 1104.
2 AI504432 InfluenzaA 8 1014
3 AI504432 NonInfected 0 1034.
4 AW046200 InfluenzaA 4 152.
5 AW046200 InfluenzaA 8 81
6 AW046200 NonInfected 0 155.
7 AW551984 InfluenzaA 4 302.
8 AW551984 InfluenzaA 8 342.
9 AW551984 NonInfected 0 238
10 Aamp InfluenzaA 4 4870
# ℹ 4,412 more rows
Une fois les données regroupées, vous pouvez également résumer plusieurs variables en même temps (et pas nécessairement sur la même variable). Par exemple, nous pourrions ajouter une colonne indiquant l’expression médiane par gène et par condition :
R
rna |>
group_by(gene, infection, time) |>
summarise(mean_expression = mean(expression),
median_expression = median(expression))
OUTPUT
`summarise()` has grouped output by 'gene', 'infection'. You can override using
the `.groups` argument.
OUTPUT
# A tibble: 4,422 × 5
# Groups: gene, infection [2,948]
gene infection time mean_expression median_expression
<chr> <chr> <dbl> <dbl> <dbl>
1 AI504432 InfluenzaA 4 1104. 1094.
2 AI504432 InfluenzaA 8 1014 985
3 AI504432 NonInfected 0 1034. 1016
4 AW046200 InfluenzaA 4 152. 144.
5 AW046200 InfluenzaA 8 81 82
6 AW046200 NonInfected 0 155. 163
7 AW551984 InfluenzaA 4 302. 245
8 AW551984 InfluenzaA 8 342. 287
9 AW551984 NonInfected 0 238 265
10 Aamp InfluenzaA 4 4870 4708
# ℹ 4,412 more rows
Défi
Calculer le niveau d’expression moyen du gène “Dok3” pour chaque temps.
R
rna |>
filter(gene == "Dok3") |>
group_by(time) |>
summarise(mean = mean(expression))
OUTPUT
# A tibble: 3 × 2
time mean
<dbl> <dbl>
1 0 169
2 4 156.
3 8 61
Count
Lorsque nous travaillons avec des données, nous souhaitons souvent
connaître le nombre d’observations trouvées pour chaque facteur ou
combinaison de facteurs. Pour cette tâche,
dplyr
fournit la fonction
count()
. Par exemple, si nous voulons compter le nombre
d’observations pour chaque échantillon infecté et non infecté :
R
rna |>
count(infection)
OUTPUT
# A tibble: 2 × 2
infection n
<chr> <int>
1 InfluenzaA 22110
2 NonInfected 10318
La fonction count()
est un raccourci pour quelque chose
que nous avons déjà vu : regrouper par une variable et la résumer en
comptant le nombre d’observations dans ce groupe. En d’autres termes,
rna %>% count(infection)
équivaut à :
R
rna |>
group_by(infection) |>
summarise(n = n())
OUTPUT
# A tibble: 2 × 2
infection n
<chr> <int>
1 InfluenzaA 22110
2 NonInfected 10318
L’exemple précédent montre l’utilisation de count()
pour
compter le nombre de lignes/observations pour un facteur
(c’est-à-dire infection
). Pour compter une combinaison
de facteurs, telle que infection
et time
,
il suffit de spécifier les deux facteurs comme arguments de
count()
:
R
rna |>
count(infection, time)
OUTPUT
# A tibble: 3 × 3
infection time n
<chr> <dbl> <int>
1 InfluenzaA 4 11792
2 InfluenzaA 8 10318
3 NonInfected 0 10318
ce qui équivaut à ceci :
R
rna |>
group_by(infection, time) |>
summarise(n = n())
OUTPUT
`summarise()` has grouped output by 'infection'. You can override using the
`.groups` argument.
OUTPUT
# A tibble: 3 × 3
# Groups: infection [2]
infection time n
<chr> <dbl> <int>
1 InfluenzaA 4 11792
2 InfluenzaA 8 10318
3 NonInfected 0 10318
Il est parfois utile de trier le résultat pour faciliter les
comparaisons. Nous pouvons utiliser arrange()
pour trier le
tableau. Par exemple, nous pourrions vouloir organiser le tableau
ci-dessus par temps :
R
rna |>
count(infection, time) |>
arrange(time)
OUTPUT
# A tibble: 3 × 3
infection time n
<chr> <dbl> <int>
1 NonInfected 0 10318
2 InfluenzaA 4 11792
3 InfluenzaA 8 10318
ou par comptage :
R
rna |>
count(infection, time) |>
arrange(n)
OUTPUT
# A tibble: 3 × 3
infection time n
<chr> <dbl> <int>
1 InfluenzaA 8 10318
2 NonInfected 0 10318
3 InfluenzaA 4 11792
Pour trier par ordre décroissant, nous devons ajouter la fonction
desc()
:
R
rna |>
count(infection, time) |>
arrange(desc(n))
OUTPUT
# A tibble: 3 × 3
infection time n
<chr> <dbl> <int>
1 InfluenzaA 4 11792
2 InfluenzaA 8 10318
3 NonInfected 0 10318
Défi
- Combien de gènes ont été analysés dans chaque échantillon ?
- Utilisez
group_by()
etsummarise()
pour évaluer la profondeur de séquençage (la somme de tous les comptes) dans chaque échantillon. Quel échantillon a la profondeur de séquençage la plus élevée ? - Choisissez un échantillon et évaluez le nombre de gènes par biotype.
- Identifiez les gènes associés à la description du phénotype “abnormal DNA methylation” et calculez leur expression moyenne (en log) au temps 0, 4 et 8.
R
## 1.
rna |>
count(sample)
OUTPUT
# A tibble: 22 × 2
sample n
<chr> <int>
1 GSM2545336 1474
2 GSM2545337 1474
3 GSM2545338 1474
4 GSM2545339 1474
5 GSM2545340 1474
6 GSM2545341 1474
7 GSM2545342 1474
8 GSM2545343 1474
9 GSM2545344 1474
10 GSM2545345 1474
# ℹ 12 more rows
R
## 2.
rna |>
group_by(sample) |>
summarise(seq_depth = sum(expression)) |>
arrange(desc(seq_depth))
OUTPUT
# A tibble: 22 × 2
sample seq_depth
<chr> <dbl>
1 GSM2545350 3255566
2 GSM2545352 3216163
3 GSM2545343 3105652
4 GSM2545336 3039671
5 GSM2545380 3036098
6 GSM2545353 2953249
7 GSM2545348 2913678
8 GSM2545362 2913517
9 GSM2545351 2782464
10 GSM2545349 2758006
# ℹ 12 more rows
R
## 3.
rna |>
filter(sample == "GSM2545336") |>
count(gene_biotype) |>
arrange(desc(n))
OUTPUT
# A tibble: 13 × 2
gene_biotype n
<chr> <int>
1 protein_coding 1321
2 lncRNA 69
3 processed_pseudogene 59
4 miRNA 7
5 snoRNA 5
6 TEC 4
7 polymorphic_pseudogene 2
8 unprocessed_pseudogene 2
9 IG_C_gene 1
10 scaRNA 1
11 transcribed_processed_pseudogene 1
12 transcribed_unitary_pseudogene 1
13 transcribed_unprocessed_pseudogene 1
R
## 4.
rna |>
filter(phenotype_description == "abnormal DNA methylation") |>
group_by(gene, time) |>
summarise(mean_expression = mean(log(expression))) |>
arrange()
OUTPUT
`summarise()` has grouped output by 'gene'. You can override using the
`.groups` argument.
OUTPUT
# A tibble: 6 × 3
# Groups: gene [2]
gene time mean_expression
<chr> <dbl> <dbl>
1 Xist 0 6.95
2 Xist 4 6.34
3 Xist 8 7.13
4 Zdbf2 0 6.27
5 Zdbf2 4 6.27
6 Zdbf2 8 6.19
Remodeler les données
Dans le tibble rna
, les lignes contiennent des valeurs
d’expression qui sont associées à une combinaison de 2 autres variables
: gene
et sample
.
Toutes les autres colonnes correspondent à des variables décrivant soit l’échantillon (organisme, âge, sexe, …) soit le gène (‘gene_biotype’, ‘ENTREZ_ID’, ‘product’, …). Les variables qui ne changent pas avec les gènes ou avec les échantillons auront la même valeur dans toutes les lignes.
R
rna |>
arrange(gene)
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 19
gene sample expression organism age sex infection strain time tissue
<chr> <chr> <dbl> <chr> <dbl> <chr> <chr> <chr> <dbl> <chr>
1 AI504432 GSM25… 1230 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
2 AI504432 GSM25… 1085 Mus mus… 8 Fema… NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
3 AI504432 GSM25… 969 Mus mus… 8 Fema… NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
4 AI504432 GSM25… 1284 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 4 Cereb…
5 AI504432 GSM25… 966 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
6 AI504432 GSM25… 918 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 8 Cereb…
7 AI504432 GSM25… 985 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 8 Cereb…
8 AI504432 GSM25… 972 Mus mus… 8 Male NonInfec… C57BL… 0 Cereb…
9 AI504432 GSM25… 1000 Mus mus… 8 Fema… Influenz… C57BL… 4 Cereb…
10 AI504432 GSM25… 816 Mus mus… 8 Male Influenz… C57BL… 4 Cereb…
# ℹ 32,418 more rows
# ℹ 9 more variables: mouse <dbl>, ENTREZID <dbl>, product <chr>,
# ensembl_gene_id <chr>, external_synonym <chr>, chromosome_name <chr>,
# gene_biotype <chr>, phenotype_description <chr>,
# hsapiens_homolog_associated_gene_name <chr>
Cette structure est appelée “format long”, car une colonne contient toutes les valeurs, et d’autres colonnes répertorient le contexte de la valeur.
Dans certains cas, le “format long” n’est pas facile à lire, et un autre format, un “format large” est préféré, comme manière plus compacte de représenter les données. Cela est typiquement le cas pour des données d’expression de gènes, qui sont généralement représentées sous forme de matrice où les gènes sont repris le long des lignes et les échantillons le long des colonnes.
Dans ce format, il devient donc simple d’explorer la relation entre les niveaux d’expression génique au sein et entre les échantillons.
OUTPUT
# A tibble: 1,474 × 23
gene GSM2545336 GSM2545337 GSM2545338 GSM2545339 GSM2545340 GSM2545341
<chr> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl>
1 Asl 1170 361 400 586 626 988
2 Apod 36194 10347 9173 10620 13021 29594
3 Cyp2d22 4060 1616 1603 1901 2171 3349
4 Klk6 287 629 641 578 448 195
5 Fcrls 85 233 244 237 180 38
6 Slc2a4 782 231 248 265 313 786
7 Exd2 1619 2288 2235 2513 2366 1359
8 Gjc2 288 595 568 551 310 146
9 Plp1 43217 101241 96534 58354 53126 27173
10 Gnb4 1071 1791 1867 1430 1355 798
# ℹ 1,464 more rows
# ℹ 16 more variables: GSM2545342 <dbl>, GSM2545343 <dbl>, GSM2545344 <dbl>,
# GSM2545345 <dbl>, GSM2545346 <dbl>, GSM2545347 <dbl>, GSM2545348 <dbl>,
# GSM2545349 <dbl>, GSM2545350 <dbl>, GSM2545351 <dbl>, GSM2545352 <dbl>,
# GSM2545353 <dbl>, GSM2545354 <dbl>, GSM2545362 <dbl>, GSM2545363 <dbl>,
# GSM2545380 <dbl>
Pour convertir les valeurs d’expression génique de rna
en un format large, nous devons créer une nouvelle table où les valeurs
de la colonne sample
deviendraient les noms des variables
de colonne.
Nous remodellons les données en fonction des observations d’intérêt, tout en continant à suivre les principles des données tidy: niveaux d’expression par gène au lieu des les afficher par gènes et par échantillons.
La transformation inverse serait de transformer les noms de colonnes en valeurs d’une nouvelle variable.
Nous pouvons effectuer ces deux transformations avec deux fonctions
du package tidyr
, à savoir pivot_longer()
et
pivot_wider()
(voir ici
pour détails).
Pivoter les données en format large
Sélectionnons les 3 premières colonnes de rna
et
utilisons pivot_wider()
pour transformer les données en
format large.
R
rna_exp <- rna |>
select(gene, sample, expression)
rna_exp
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 3
gene sample expression
<chr> <chr> <dbl>
1 Asl GSM2545336 1170
2 Apod GSM2545336 36194
3 Cyp2d22 GSM2545336 4060
4 Klk6 GSM2545336 287
5 Fcrls GSM2545336 85
6 Slc2a4 GSM2545336 782
7 Exd2 GSM2545336 1619
8 Gjc2 GSM2545336 288
9 Plp1 GSM2545336 43217
10 Gnb4 GSM2545336 1071
# ℹ 32,418 more rows
pivot_wider
prend trois arguments principaux :
- les données à transformer ;
- le
names_from
: la colonne dont les valeurs deviendront les nouveaux noms de colonne ; - les
values_from
: la colonne dont les valeurs rempliront les nouvelles colonnes.

rna
.
R
rna_wide <- rna_exp |>
pivot_wider(names_from = sample,
values_from = expression)
rna_wide
OUTPUT
# A tibble: 1,474 × 23
gene GSM2545336 GSM2545337 GSM2545338 GSM2545339 GSM2545340 GSM2545341
<chr> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl>
1 Asl 1170 361 400 586 626 988
2 Apod 36194 10347 9173 10620 13021 29594
3 Cyp2d22 4060 1616 1603 1901 2171 3349
4 Klk6 287 629 641 578 448 195
5 Fcrls 85 233 244 237 180 38
6 Slc2a4 782 231 248 265 313 786
7 Exd2 1619 2288 2235 2513 2366 1359
8 Gjc2 288 595 568 551 310 146
9 Plp1 43217 101241 96534 58354 53126 27173
10 Gnb4 1071 1791 1867 1430 1355 798
# ℹ 1,464 more rows
# ℹ 16 more variables: GSM2545342 <dbl>, GSM2545343 <dbl>, GSM2545344 <dbl>,
# GSM2545345 <dbl>, GSM2545346 <dbl>, GSM2545347 <dbl>, GSM2545348 <dbl>,
# GSM2545349 <dbl>, GSM2545350 <dbl>, GSM2545351 <dbl>, GSM2545352 <dbl>,
# GSM2545353 <dbl>, GSM2545354 <dbl>, GSM2545362 <dbl>, GSM2545363 <dbl>,
# GSM2545380 <dbl>
Notez que par défaut, la fonction pivot_wider()
ajoutera
NA
pour les valeurs manquantes.
Imaginons que nous ayons des valeurs d’expression manquantes pour certains gènes dans certains échantillons. Dans cet exemple, le gène Cyp2d22 n’aune donnée d’expression que pour l’echantillon GSM2545338.
Par défaut, la fonction pivot_wider()
ajoutera
NA
pour les valeurs manquantes. Ceci peut être paramétré
avec l’argument values_fill
de la fonction
pivot_wider()
.
R
rna_with_missing_values %>%
pivot_wider(names_from = échantillon,
values_from = expression)
ERROR
Error: object 'rna_with_missing_values' not found
R
rna_with_missing_values %>%
pivot_wider(names_from = échantillon,
values_from = expression,
valeurs_fill = 0)
ERROR
Error: object 'rna_with_missing_values' not found
Pivoter les données en format long
Dans la situation inverse, nous utilisons les noms de colonnes et les transformons en deux nouvelles variables. Une variable représente le nom de colonne contenant les valeurs, et l’autre contenant les valeurs précédemment associées aux noms de colonnes.
pivot_longer()
prend quatre arguments principaux :
- les données à transformer ;
-
names_to
: le nouveau nom de colonne que nous souhaitons créer et remplir avec les noms de colonnes actuels ; -
values_to
: le nouveau nom de colonne que nous souhaitons créer et remplir avec valeurs actuelles ; - les noms des colonnes à utiliser pour renseigner les variables
names_to
etvalues_to
(ou à ignorer).
{r, fig.cap="Pivot long des données `rna`.", echo=FALSE, message=FALSE} knitr::include_graphics("fig/pivot_longer.png")
Pour créer `rna_long` à partir de `rna_wide`, nous créons une première variable `"sample"` qui conteindra les noms des échantillons repris comme noms de colonnes (hormi `gene`), et une seconde, `"expression"`, qui contiendra les valeurs de la table. Nous ommettons la colonne `gene` pour la transformation en y ajoutant le signe moins.
Notez que les nouveaux noms de colonnes sont repris entre guillemets.
``` r
rna_long <- rna_wide %>%
pivot_longer(names_to = "sample",
values_to = "expression",
-gene)
rna_long
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 3
gene sample expression
<chr> <chr> <dbl>
1 Asl GSM2545336 1170
2 Asl GSM2545337 361
3 Asl GSM2545338 400
4 Asl GSM2545339 586
5 Asl GSM2545340 626
6 Asl GSM2545341 988
7 Asl GSM2545342 836
8 Asl GSM2545343 535
9 Asl GSM2545344 586
10 Asl GSM2545345 597
# ℹ 32,418 more rows
Nous aurions également pu spécifier les colonnes à inclure. Quand il
faut inclure un grand nombre de colonnes, et il est plus facile de
spécifier ce qu’il faut rassembler que ce qu’il faut ignorer. Ici, la
fonction starts_with()
peut aider à récupérer des colonnes
sans avoir à toutes les énumérer ! Une autre possibilité serait
d’utiliser l’opérateur :
!
R
rna_wide %>%
pivot_longer(names_to = "sample",
values_to = "expression",
cols = start_with("GSM"))
ERROR
Error in `pivot_longer()`:
ℹ In argument: `start_with("GSM")`.
Caused by error in `start_with()`:
! could not find function "start_with"
R
rna_wide %> %
pivot_longer(names_to = "sample",
valeurs_to = "expression",
GSM2545336:GSM2545380)
ERROR
Error in rna_wide %> % pivot_longer(names_to = "sample", valeurs_to = "expression", : could not find function "%> %"
Notez que si nous avions des valeurs manquantes dans le format large,
le NA
serait inclus dans le nouveau format long.
Souvenez-vous de notre précédent tibble fictif contenant des valeurs manquantes :
R
rna_with_missing_values
ERROR
Error: object 'rna_with_missing_values' not found
R
wide_with_NA <- rna_with_missing_values %>%
pivot_wider(names_from = sample,
values_from = expression)
ERROR
Error: object 'rna_with_missing_values' not found
R
wide_with_NA
ERROR
Error: object 'wide_with_NA' not found
R
wide_with_NA %>%
pivot_longer(names_to = "sample",
values_to = "expression",
-gene)
ERROR
Error: object 'wide_with_NA' not found
Passer à des formats larges et longs peut être un moyen utile d’équilibrer un ensemble de données afin que chaque réplique ait la même composition.
Question
A partir de la table rna
, utilisez la fonction
pivot_wider()
pour créer un tableau au format large donnant
les niveaux d’expression génique chez chaque souris. Utilisez ensuite la
fonction pivot_longer()
pour restaurer le tableau au format
long.
R
rna1 <- rna %>%
select(gene, mouse, expression) %>%
pivot_wider(names_from = mouse, values_from = expression)
rna1
OUTPUT
# A tibble: 1,474 × 23
gene `14` `9` `10` `15` `18` `6` `5` `11` `22` `13` `23`
<chr> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl> <dbl>
1 Asl 1170 361 400 586 626 988 836 535 586 597 938
2 Apod 36194 10347 9173 10620 13021 29594 24959 13668 13230 15868 27769
3 Cyp2d22 4060 1616 1603 1901 2171 3349 3122 2008 2254 2277 2985
4 Klk6 287 629 641 578 448 195 186 1101 537 567 327
5 Fcrls 85 233 244 237 180 38 68 375 199 177 89
6 Slc2a4 782 231 248 265 313 786 528 249 266 357 654
7 Exd2 1619 2288 2235 2513 2366 1359 1474 3126 2379 2173 1531
8 Gjc2 288 595 568 551 310 146 186 791 454 370 240
9 Plp1 43217 101241 96534 58354 53126 27173 28728 98658 61356 61647 38019
10 Gnb4 1071 1791 1867 1430 1355 798 806 2437 1394 1554 960
# ℹ 1,464 more rows
# ℹ 11 more variables: `24` <dbl>, `8` <dbl>, `7` <dbl>, `1` <dbl>, `16` <dbl>,
# `21` <dbl>, `4` <dbl>, `2` <dbl>, `20` <dbl>, `12` <dbl>, `19` <dbl>
R
rna1 %>%
pivot_longer(names_to = "mouse_id", values_to = "counts", -gene)
OUTPUT
# A tibble: 32,428 × 3
gene mouse_id counts
<chr> <chr> <dbl>
1 Asl 14 1170
2 Asl 9 361
3 Asl 10 400
4 Asl 15 586
5 Asl 18 626
6 Asl 6 988
7 Asl 5 836
8 Asl 11 535
9 Asl 22 586
10 Asl 13 597
# ℹ 32,418 more rows
Question
Extraire les gènes situés sur les chromosomes X et Y du data frame
rna
et remodeler les données avec la variable
sex
en colonnes et la varibale chromosome_name
en lignes et l’expression moyenne des gènes localisés dans chaque
chromosome comme valeurs, comme dans le tableau suivant :

Il faudra résumer avant de remodeler !
Calculons d’abord le niveau d’expression moyen des gènes des chromosomes X et Y pour les échantillons mâles et femelles…
R
arn %>%
filter(chromosome_name == "Y" | chromosome_name == "X") %>%
group_by(sex, chromosome_name) %>%
résumé(moyenne = moyenne(expression))
ERROR
Error in résumé(., moyenne = moyenne(expression)): could not find function "résumé"
Et pivotons le tableau au format large
R
rna_1 <- rna %>%
filter(chromosome_name == "Y" | chromosome_name == "X") %>%
group_by(sex, chromosome_name) %>%
summarise(mean = moyenne(expression)) %>%
pivot_wider(names_from = sexe,
valeurs_from = moyenne)
ERROR
Error in `summarise()`:
ℹ In argument: `mean = moyenne(expression)`.
ℹ In group 1: `sex = "Female"` `chromosome_name = "X"`.
Caused by error in `moyenne()`:
! could not find function "moyenne"
R
rna_1
ERROR
Error: object 'rna_1' not found
Maintenant, prenez cette trame de données et transformez-la avec
pivot_longer()
afin que chaque ligne soit une combinaison
unique de chromosome_name
par gender
.
R
rna_1 %>%
pivot_longer(names_to = "gender",
valeurs_to = "mean",
-chromosome_name)
ERROR
Error: object 'rna_1' not found
ERROR
Error in `pivot_longer()`:
! Arguments in `...` must be used.
✖ Problematic argument:
• valeurs_to = "mean"
ℹ Did you misspell an argument name?
Question
Utilisez l’ensemble de données rna
pour créer une
matrice d’expression où chaque ligne représente les niveaux d’expression
moyens des gènes et les colonnes représentent les différents temps.
Calculons d’abord l’expression moyenne par gène et par temps
R
arn %>%
group_by(gène, temps) %>%
résumé(mean_exp = moyenne(expression))
ERROR
Error in résumé(., mean_exp = moyenne(expression)): could not find function "résumé"
avant d’utiliser la fonction pivot_wider()
R
rna_time <- rna |>
group_by(gene, time) |>
summarise(mean_exp = mean(expression)) |>
pivot_wider(names_from = time,
values_from = mean_exp)
OUTPUT
`summarise()` has grouped output by 'gene'. You can override using the
`.groups` argument.
R
rna_time
OUTPUT
# A tibble: 1,474 × 4
# Groups: gene [1,474]
gene `0` `4` `8`
<chr> <dbl> <dbl> <dbl>
1 AI504432 1034. 1104. 1014
2 AW046200 155. 152. 81
3 AW551984 238 302. 342.
4 Aamp 4603. 4870 4763.
5 Abca12 5.29 4.25 4.14
6 Abcc8 2576. 2609. 2292.
7 Abhd14a 591. 547. 432.
8 Abi2 4881. 4903. 4945.
9 Abi3bp 1175. 1061. 762.
10 Abl2 2170. 2078. 2131.
# ℹ 1,464 more rows
Notez que cela génère un tibble avec certains noms de colonnes commençant par un nombre. Si nous voulions sélectionner la colonne correspondant aux points temporels, nous ne pourrions pas utiliser directement les noms des colonnes… Que se passe-t-il lorsque l’on sélectionne la colonne 4 ?
R
rna |>
group_by(gene, time) |>
summarise(mean_exp = mean(expression)) |>
pivot_wider(names_from = time,
values_from = mean_exp) |>
select(gene, 4)
OUTPUT
`summarise()` has grouped output by 'gene'. You can override using the
`.groups` argument.
OUTPUT
# A tibble: 1,474 × 2
# Groups: gene [1,474]
gene `8`
<chr> <dbl>
1 AI504432 1014
2 AW046200 81
3 AW551984 342.
4 Aamp 4763.
5 Abca12 4.14
6 Abcc8 2292.
7 Abhd14a 432.
8 Abi2 4945.
9 Abi3bp 762.
10 Abl2 2131.
# ℹ 1,464 more rows
Pour sélectionner le temp 4, il faudrait citer le nom de la colonne, avec des backticks “\`”
R
rna |>
group_by(gene, time) |>
summarise(mean_exp = mean(expression)) |>
pivot_wider(names_from = time,
values_from = mean_exp) |>
select(gene, `4`)
OUTPUT
`summarise()` has grouped output by 'gene'. You can override using the
`.groups` argument.
OUTPUT
# A tibble: 1,474 × 2
# Groups: gene [1,474]
gene `4`
<chr> <dbl>
1 AI504432 1104.
2 AW046200 152.
3 AW551984 302.
4 Aamp 4870
5 Abca12 4.25
6 Abcc8 2609.
7 Abhd14a 547.
8 Abi2 4903.
9 Abi3bp 1061.
10 Abl2 2078.
# ℹ 1,464 more rows
Une autre possibilité serait de renommer les colonnes, en choisissant des noms qui ne commencent pas par un chiffre :
R
rna |>
group_by(gene, time) |>
summarise(mean_exp = mean(expression)) |>
pivot_wider(names_from = time,
values_from = mean_exp) |>
rename("time0" = `0`, "time4" = `4`, "time8" = `8`) |>
select(gene, time4)
OUTPUT
`summarise()` has grouped output by 'gene'. You can override using the
`.groups` argument.
OUTPUT
# A tibble: 1,474 × 2
# Groups: gene [1,474]
gene time4
<chr> <dbl>
1 AI504432 1104.
2 AW046200 152.
3 AW551984 302.
4 Aamp 4870
5 Abca12 4.25
6 Abcc8 2609.
7 Abhd14a 547.
8 Abi2 4903.
9 Abi3bp 1061.
10 Abl2 2078.
# ℹ 1,464 more rows
Question
Utilisez le data frame précédent contenant les niveaux d’expression moyens par temps et créez une nouvelle colonne contenant les fold-changes entre les temps 8 et 0, et les temps 8 et 4. Convertissez ce tableau en un tableau au format long regroupant les fold-changes calculés.
À partir du tibble rna_time
:
R
arn_time
ERROR
Error: object 'arn_time' not found
Calculer les fold-changes :
R
rna_time %>%
muter (time_8_vs_0 = `8` / `0`, time_8_vs_4 = `8` / `4`)
ERROR
Error in muter(., time_8_vs_0 = `8`/`0`, time_8_vs_4 = `8`/`4`): could not find function "muter"
Et utilisez la fonction pivot_longer()
:
R
rna_time |>
mutate(time_8_vs_0 = `8` / `0`, time_8_vs_4 = `8` / `4`) |>
pivot_longer(names_to = "comparisons",
values_to = "Fold_changes",
time_8_vs_0:time_8_vs_4)
OUTPUT
# A tibble: 2,948 × 6
# Groups: gene [1,474]
gene `0` `4` `8` comparisons Fold_changes
<chr> <dbl> <dbl> <dbl> <chr> <dbl>
1 AI504432 1034. 1104. 1014 time_8_vs_0 0.981
2 AI504432 1034. 1104. 1014 time_8_vs_4 0.918
3 AW046200 155. 152. 81 time_8_vs_0 0.522
4 AW046200 155. 152. 81 time_8_vs_4 0.532
5 AW551984 238 302. 342. time_8_vs_0 1.44
6 AW551984 238 302. 342. time_8_vs_4 1.13
7 Aamp 4603. 4870 4763. time_8_vs_0 1.03
8 Aamp 4603. 4870 4763. time_8_vs_4 0.978
9 Abca12 5.29 4.25 4.14 time_8_vs_0 0.784
10 Abca12 5.29 4.25 4.14 time_8_vs_4 0.975
# ℹ 2,938 more rows
Jointures de tables
Dans de nombreuses situations réelles, les données sont réparties sur plusieurs tables. Cela se produit généralement parce que différents types d’informations sont collectés à partir de différentes sources.
Il peut être souhaitable que certaines analyses combinent les données de deux ou plusieurs tables en un seul data frame basé sur une colonne commune à toutes les tables.
Le package dplyr
fournit un ensemble de fonctions de
jointure pour combiner deux data frames en fonction des correspondances
entre les colonnes spécifiées. Ici, nous fournissons une brève
introduction aux jointures. Pour en savoir plus, veuillez vous référer
au chapitre sur les jointures
de table. Le Data Transformation Cheat Sheet fournit également un
bref aperçu sur les jointures de table.
Nous allons illustrer la jointure en utilisant une petite table,
rna_mini
que nous allons créer en extrayant de la table
rna
d’origine 3 colonnes et 10 lignes.
R
rna_mini <- rna %>%
select(gène, échantillon, expression) %>%
head(10)
ERROR
Error in `select()`:
! Can't select columns that don't exist.
✖ Column `gène` doesn't exist.
R
rna_mini
ERROR
Error: object 'rna_mini' not found
Le deuxième tableau, annot1
, contient 2 colonnes,
gene
et gene_description
. Vous pouvez soit télécharger
annot1.csv en cliquant sur le lien puis en déplaçant le fichier dans
le dossier data/
, ou vous pouvez utiliser le code R
ci-dessous pour le télécharger directement dans le dossier
data
.
R
download.file(url = "https://carpentries-incubator.github.io/bioc-intro/data/annot1.csv",
destfile = "data/annot1.csv")
annot1 <- read_csv(file = "data/annot1.csv")
annot1
OUTPUT
# A tibble: 10 × 2
gene gene_description
<chr> <chr>
1 Cyp2d22 cytochrome P450, family 2, subfamily d, polypeptide 22 [Source:MGI S…
2 Klk6 kallikrein related-peptidase 6 [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:1343166]
3 Fcrls Fc receptor-like S, scavenger receptor [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:19…
4 Plp1 proteolipid protein (myelin) 1 [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:97623]
5 Exd2 exonuclease 3'-5' domain containing 2 [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:192…
6 Apod apolipoprotein D [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:88056]
7 Gnb4 guanine nucleotide binding protein (G protein), beta 4 [Source:MGI S…
8 Slc2a4 solute carrier family 2 (facilitated glucose transporter), member 4 …
9 Asl argininosuccinate lyase [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:88084]
10 Gjc2 gap junction protein, gamma 2 [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:2153060]
Nous voulons maintenant joindre ces deux tables en une seule
contenant toutes les variables en utilisant la fonction
full_join()
du package dplyr
. La fonction
trouvera automatiquement la variable commune correspondant aux colonnes
de la première et de la deuxième table. Dans ce cas, gene
est la seule variable commune. De telles variables sont appelées clés.
Les clés sont utilisées pour faire correspondre les observations dans
différentes tables.
R
full_join(rna_mini, annot1)
ERROR
Error: object 'rna_mini' not found
En recherche, les gènes sont parfois només différemment.
La table annot2
est exactement la même que
annot1
sauf que la variable contenant les noms de gènes est
nommée différemment. Encore une fois, téléchargez
annot2.csv vous-même et déplacez-le vers data/
ou
utilisez le code R ci-dessous.
R
download.file(url = "https://carpentries-incubator.github.io/bioc-intro/data/annot2.csv",
destfile = "data/annot2.csv")
annot2 <- read_csv(file = "data/annot2.csv")
annot2
OUTPUT
# A tibble: 10 × 2
external_gene_name description
<chr> <chr>
1 Cyp2d22 cytochrome P450, family 2, subfamily d, polypeptide 22 [S…
2 Klk6 kallikrein related-peptidase 6 [Source:MGI Symbol;Acc:MGI…
3 Fcrls Fc receptor-like S, scavenger receptor [Source:MGI Symbol…
4 Plp1 proteolipid protein (myelin) 1 [Source:MGI Symbol;Acc:MGI…
5 Exd2 exonuclease 3'-5' domain containing 2 [Source:MGI Symbol;…
6 Apod apolipoprotein D [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:88056]
7 Gnb4 guanine nucleotide binding protein (G protein), beta 4 [S…
8 Slc2a4 solute carrier family 2 (facilitated glucose transporter)…
9 Asl argininosuccinate lyase [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:88084]
10 Gjc2 gap junction protein, gamma 2 [Source:MGI Symbol;Acc:MGI:…
Si aucun des noms de variables ne correspond, nous pouvons définir
manuellement les variables à utiliser pour la correspondance. Ces
variables peuvent être définies en utilisant l’argument by
,
comme indiqué ci-dessous avec les tables rna_mini
et
annot2
.
R
full_join(rna_mini, annot2, by = c("gene" = "external_gene_name"))
ERROR
Error: object 'rna_mini' not found
Comme on peut le voir ci-dessus, le nom de variable de la première table est lors de la jointure.
Défi:
Téléchargez la table annot3
en cliquant ici
et placez la table dans votre dossier data
. À l’aide de la
fonction full_join()
, joignez les tables
rna_mini
et annot3
. Que s’est-il passé pour
les gènes Klk6, mt-Tf, mt-Rnr1,
mt-Tv, mt-Rnr2 et mt-Tl1 ?
R
annot3 <- read_csv("data/annot3.csv")
full_join(rna_mini, annot3)
ERROR
Error: object 'rna_mini' not found
Les gènes Klk6 ne sont présents que dans
rna_mini
, tandis que les gènes mt-Tf,
mt-Rnr1, mt-Tv, mt-Rnr2 et mt-Tl1
sont présent uniquement dans la table annot3
. Leurs valeurs
respectives pour les variables du tableau ont été codées comme
manquantes.
Exporter des données
Maintenant que vous avez appris à utiliser dplyr
pour
extraire des informations de ou résumer vos données, vous souhaiterez
peut-être exporter ces nouveaux jeux de données pour les partager avec
vos collaborateurs ou pour les archiver.
Tout comme à la fonction read_csv()
utilisée pour
lire/importer les fichiers CSV dans R, il existe une fonction
write_csv()
qui génère des fichiers CSV à partir de data
frames.
Avant d’utiliser write_csv()
, nous allons créer un
nouveau dossier, data_output
, dans notre répertoire de
travail, pour y sauvegarder nos nouveaux de données. Nous ne voulons pas
écrive les ensembles de données générés dans le même répertoire que nos
données brutes. C’est en effet une bonne pratique de les garder séparés.
Le dossier data
ne doit contenir que les données brutes et
non modifiées, et doit être laissé tel quel pour nous assurer que nous
ne les supprimons ou modifions pas. En revanche, notre script générera
le contenu du répertoire data_output
, donc même si les
fichiers qu’il contient sont supprimés, nous pourrons toujours les
regénérer.
Utilisons write_csv()
pour sauvegarder la table
rna_wide
que nous avons créée précédemment.
R
write_csv(rna_wide, file = "data_output/rna_wide.csv")
Key Points
- Données tabulaires dans R utilisant le méta-package tidyverse.